Allium cepa L. var agrogatum Don




Yüklə 269.76 Kb.
tarix26.04.2016
ölçüsü269.76 Kb.




吉林大学远程教育


本科生毕业论文(设计)

中文题目分蘖葱头化学成分及活性的研究
学生姓名 * * * 专业 药 学

层次年级 **** 学号 ********

指导教师 *** 职称 教 授

学习中心 **学习中心 成绩


20 月 日

摘 要


分蘖葱头为百合科葱属植物(Allium cepa L. var. agrogatum Don.)的鳞茎。本文采用有机溶剂提取、柱层析分离等方法对分蘖葱头的化学成分进行分离纯化,得到了11个化合物。通过理化常数测定及波谱分析鉴定了其中的9个化合物的结构,分别确定为: N-2-4-羟基苯基)乙基〕-3-4-羟基苯基)-2-丙烯酰胺(Ⅰ),1,6-己内酰胺(Ⅱ), 胡萝卜苷(Ⅲ),β-谷甾醇(Ⅳ),槲皮素(Ⅴ),山柰酚(Ⅵ),槲皮素4ˊ-0-β-D-吡喃葡萄糖苷(Ⅶ),槲皮素3,4ˊ--0-β-D-吡喃葡萄糖苷(Ⅷ),槲皮素3ˊ-甲氧基-4ˊ-0-β-D-吡喃葡萄糖苷(Ⅸ)。化合物Ⅰ为新化合物,命名为分蘖葱头甲素(Allium A),Ⅱ为新天然产物,命名为分蘖葱头乙素(Allium B),Ⅲ和Ⅳ为首次从分蘖葱头中分得的化合物,Ⅴ-Ⅸ为本教研室已报道的黄酮类化合物。另外尚有两个化合物正在鉴定中。作者对分蘖葱头提取物进行了减肥作用实验研究,结果表明分蘖葱头提取物具有一定的减肥作用。

关键词 分蘖葱头 减肥作用 1,6-己内酰胺

N-〔2-(4-羟基苯基)乙基〕-3-(4-羟基苯基)-2-丙烯酰胺

目 录



一、前言 ………………………………………………………………………………

1

1.1 分蘖葱头的研究概况………………………………………………………

1

1.2葱属植物的研究进展………………………………………………………

2

二、化学成分的研究…………………………………………………………………

6

结果分析……………………………………………………………………

6

实验部分…………………………………………………………………………

12

化学成分的鉴定…………………………………………………………………

13

三、药理活性部分……………………………………………………………………

18

1.材料与方法……………………………………………………………………

18

2.实验结果………………………………………………………………………

18

3.讨论……………………………………………………………………………

20

四、 结果与讨论………………………………………………………………………

21

参考文献………………………………………………………………………………

22

致 谢…………………………………………………………………………………

24


一、前 言

分蘖葱头为百合科葱属植物(Allium cepa L. var. agrogatum Don.)的鳞茎。原植物为多年生草本,盛产于东北各地。其鳞茎近似球形,外包赤红色皮膜,多为民间食用,未作药用。该植物的化学成分及生物活性的研究,除了我校药物研究室及药物化学教研室发表的论文外(经吉林大学新民校区图书馆文献检索室查证),至今国内外均未见报道。现将其化学成分及活性综述如下:

1.1 分蘖葱头的研究概况

本校药物研究室1980年开始对分蘖葱头干扰花生四烯酸代谢系列及有效成分进行研究[1]。证明其提取物具有干扰血小板花生四烯酸代谢,抑制环氧化酶活性,抑制血栓素A2(TXA2)及12(S)-羟基-十七碳三烯酸(HHT)的合成等作用[2]。

1984年,我校江漫涛等用组织匀浆法对分蘖葱头挥发油的化学成分进行研究,从该植物中分离得到了15种挥发性成分,确定了其中具有很强抑制血小板聚集和TXA2合成活性的8种硫化物,他们分别为二甲基二硫、2,4(2,5)二甲基噻吩、二甲基三硫、二正丙基二硫、甲基烯基二硫、正丙基烯丙基二硫和甲基正丙基三硫、甲基烯丙基三硫(MATS)等[3],体外实验证实MATS具有干扰血小板花生四烯酸代谢的作用[2]。1994年,本校马秀俐等用有机化学合成方法成功地合成了MATS[4],并证明其生物活性同分蘖葱头中提出的MATS相同。

1980年,杨晓虹等在降压实验中发现分蘖葱头二氯甲烷提取物有降压作用[5];1988年,孙启良等进一步对分蘖葱头进行研究,首次从分蘖葱头中分离得到具有降压作用的前列腺素A1(PGA1)单体,并鉴定出结构[6]。由血管内皮细胞合成的前列环素(PGI2),能强烈地抑制血小板聚集及舒张血管,具有抗血栓、保护心血管作用;而由血小板合成的TXA2则相反,具有强烈促进血小板聚集及收缩血管作用,可导致血栓形成。因此两者含量的相对比值PGI2/TXA2与动脉硬化、冠心病等一些重要的血栓性心血管疾病的发病有密切关系。分蘖葱头既能明显抑制TXA2合成,又能增强PGI2合成,且本身又含有扩血管降血压的PGA1单体,具有良好的开发前景。



分蘖葱头挥发油及PGA1尽管具有很强的生物活性,但在植物中的含量前者仅为0.3—0.4%[2],后者则更少[5,6]。近几年本校药物化学教研室开始对分蘖葱头中的非挥发性成分进行研究。首次从分蘖葱头中分离鉴定出五种黄酮类化合物,它们分别为:化合物(Ⅰ) 槲皮素(quercetin), (Ⅱ) 山柰酚(kaempferol, (Ⅲ) 槲皮素4ˊ-0-β-D-吡喃葡萄糖苷(quercetin

4ˊ-0-β-D-glucopyranoside), (Ⅳ)槲皮素3,4ˊ-二-0-β-D-吡喃葡萄糖苷(quercetin 3,4ˊ-di-0--β-D-glucopyranoside),(Ⅴ) 槲皮素3ˊ-甲氧基-4ˊ-0-β-D-吡喃葡萄糖苷(quercetin 3ˊ-methoxy-4ˊ-0-β-D-glucopyrano- side),其中Ⅴ为文献未见报道的新化合物[7]本校药物化学教研室杨晓虹等对分蘖葱头粗提物的血小板聚集作用进行了研究,证明正丁醇提取物抑制血小板聚集作用最强,其次为乙酸乙酯提取物、氯仿提取物和水提取物[8]。这为追踪其活性物质提供了科学依据。



1.2葱属植物的研究进展

百合科(Liliaceae)葱属(Allium)植物多为人们日常食用的蔬菜及调味品,约500多个品种,我国约有110多种。主要分布于东北、华北、西北及西南地区[9]。葱属植物主要含有挥发油、甾体皂苷、黄酮、水溶性多糖、氨基酸、苯丙素酚类、植物血凝素、维生素以及微量元素等。已开发出多种保健品及药品,用于抗菌、抗癌及心脑血管疾病的防治等。



1.2.1化学成分及活性

1.2.1.1含氮化合物:近年来,从葱属植物中分离得到了一些含氮化合物,如,生物碱、核苷酸、氨基酸及酰胺等。从A. odorum[10]得到了一个有毒扁豆碱骨架结构的生物碱Alline1)(见图1-1)。从A. macrostemon[11,12]的鳞茎得到两个生物碱,2,3,4,9-四氢-1-甲基-1H-吡啶骈〔3,4-b〕吲哚-3-羧酸(2,3,4,9-tetrahydro-1-methyl-1H-pyrido3,4-bindole-3-carboxylic acid)2)和2,3,4,9-四氢-1H-吡啶骈〔3,4-b〕吲哚-3-羧酸(2,3,4,9-tetrahydro-1H-pyrido3,4-bindole-3-carboxylic acid)3),均为β-咔啉的衍生物(见图1-1),同时还分出腺苷、胸苷、鸟苷、色氨酸等含氮化合物。并进行了抗人血小板活性测试,结果表明:含氮化合物中的腺苷活性最强,为阳性对照药阿司匹林的15倍,与甾体皂苷的活性相当。而胸苷活性最弱,这说明部分含氮化合物亦是其主要活性成分之一[11]。首次从A.tuberosum[13]中分离出的tuberceramide,其结构与N-(2’,3’-dihydroxytetracosenoyl)-2-amino-1,3,4-trihydroxyoctadecane相类似,但是确切结构尚未确定.A.onion A. bakeriA. chinense的鳞茎中分出了3个酰胺类化合物即:N-p-coumaroyltyramine, N-p-trans- feruloyl tyramine, N-p-cis-coumarpoyl-tyramine[14,15,16]。药理实验表明从A. Bakeri的乙酸乙酯部分得到的两种酰胺类化合物对2μM ADP诱导的人血小板聚集初级及次级波均有抑制作用[15]。从A.onion [17] A.leek[18]的根中得到了含氮化合物(4octadecyl-3-hydroxyindole(见图1-1);这种含氮化合物具有很强的抗真菌活性,主要是通过抑制蛋白质合成来抑制真菌的生长。从A.sativum L[35]的鳞茎中分离并测定了5个脑苷脂类含氮化合物(5-9),其中(5)、(6)、(9)是首次从该植物中得到(见图1-1)。

1.2.1.2甾体皂苷:甾体皂苷是葱属植物中的一类重要的生物活性成分,主要存在于鳞茎中。甾体皂苷主要为螺甾烷醇和呋甾烷醇与D-葡萄糖 、D-半乳糖、D-木糖、L-鼠李糖以及L-阿拉伯糖等组成的单糖苷或多糖苷。 80年代初,前苏联学者[19]曾对葱属植物中甾体皂苷类成分进行了系统研究,已从葱属植物中分离得到90多种甾体皂苷。某些甾体皂苷具有抗霉菌、抗血小板聚集及促纤维溶解作用、抗肿瘤作用、抑制cAMP磷酸二酯酶活性等。彭军鹏等从薤白[20]A.macrostemon Bunge)、薤[20]A.chinense G.Don)及大蒜[21]A. sativum L.)中分离的新甾体皂苷对ADP诱导的血小板聚集有不同程度的抑制作用。从A.giganteum[22]中分离的新螺甾皂苷能显著抑制cAMP磷酸二酯酶的活性,其作用几乎等于已知的抑制剂罂粟碱,而且从中分离的两个新呋甾皂苷的抑制活性均强于相应的螺甾皂苷。从A.chinense[23]中得到的一个新甾体皂苷亦能显著抑制cAMP磷酸二酯酶活性。A. vineal[24]的总皂苷对青霉菌Penicillium expansumpenicillium expansum的生长也有一定的抑制作用。从A.sphaerocephalon[25]中分离的一种新呋甾皂苷,其相应的螺甾皂苷具有抗白血病MOLT-4细胞的细胞毒作用。从韭葱(A.porrum[26]中分离的四种新甾体皂苷配基对体外四种不同的肿瘤细胞(人黑色素瘤细胞、鼠单核白细胞/巨噬细胞、鼠纤维肉瘤细胞、鼠白血病细胞)均有较强的细胞毒和抗增生作用。

1.2.1.3 胆甾糖苷:近年来,从葱属植物中还发现有胆甾糖苷,1990年Vollerner[27]A.suvoroviiA.stipitatum果实中分出两个胆甾糖苷,用X-ray衍射测定了其结构并确定其C22为S型;Sashida[28,29,30]等也从产于中亚的葱属植物A.schubertii, A.stipitatum, A.albopilosumA.ostrowskianum中得到9个胆甾糖苷。

1.2.1.4黄酮类成分:葱属植物中的黄酮类成分,主要为黄酮醇类和花色素类。黄酮醇类多为山柰酚(kaempferol)及槲皮素(quercetin)与葡萄糖组成的单糖苷或多糖苷。花色素类则主要为花青素(cyanidin)、天竺葵素(pelargonidin)、芍药素(peonidin)等与葡萄糖或脂肪酸组成的花色苷酯。冬葱(Shallot)中主要是槲皮素4ˊ-葡萄糖苷和槲皮素;而洋葱(onion)中主要是槲皮素、槲皮素4ˊ-葡萄糖苷和3,4ˊ-槲皮素二葡萄糖苷为主,有时为鼠李素单糖苷或山柰酚单糖苷[25]。Carotenuto[31,32]等发现从A. ursinumA. neapolitanum中分出的黄酮化合物有抑制胶原诱导的血小板聚集作用。在葱属植物黄酮类化合物的活性研究中,研究较多的是槲皮素及其糖苷,槲皮素能选择地抑制转移的肿瘤细胞(H35和ras/3T3)的生长,抑制肿瘤细胞NIH/3T3和致癌基因H-ras的转移。洋葱[33]中的槲皮素及其糖苷(槲皮素4ˊ-葡萄糖苷)还能诱导小鼠Hepalclc 7细胞中抗致癌的醌还原酶活性。总之,葱属植物中的黄酮类成分不仅具有降血脂、抗血小板聚集、抗肿瘤、抗氧化、降血糖等作用,而且对多种酶起协调作用。

1.2.1.5硫化物及其它成分:葱属植物含有挥发性硫化物而具有特殊的臭味,是其重要的生物活性物质。自1884年Weitheim[3]从大蒜中分出二烯丙基二硫化物和少量二烯丙基三硫化物以来,至今已从葱属植物挥发油中分离鉴定了90多种硫化物,一般为链状二硫醚及三硫醚。另外,从葱属植物中还分离得到香豆酸、对羟基苯甲酸[34]、丁香苷[11]等。

综上所述,我国的葱属植物资源非常丰富,品种繁多,在防治心血管疾病及抗肿瘤等方面有明显的生物活性,极具开发价值。因此,为了充分利用我国植物资源,有必要对葱属植物进行深入系统研究。其中分蘖葱头广泛分布于东北地区,是人们熟知并喜爱的蔬菜,而其化学成分和药理作用却鲜为人知。为更好地利用这一植物资源,我们对分蘖葱头的非挥发性成分进行了研究,为开发抗心脑血管疾病的新药研究提供了可靠的科学依据。


Fig 1-1 New nitrogen compounds from Allium spp.

(1) (2)


(3) (4)




(5)n=11 (6)n=12



(7)n=13 (8)n=14



(9)n=15


二、化学成分的研究

结果分析

从分蘖葱头中分离得到了11个化合物,通过理化常数、波谱分析和化学方法鉴定了9个单体的结构如下表所示。



名 称 结 构 检索情况

Ⅰ N-[2-(4-羟基苯基) 新化合物

乙基]-3-(4-羟基苯基)

-2-丙烯酰胺


Ⅱ 1,6-己 内 酰 胺 新天然产物



Ⅲ 胡萝卜苷 首次分离得到



Ⅳ β-谷甾醇 首次分离得到





名 称 结 构 检索情况

Ⅴ 槲 皮 素 已报道



Ⅵ 山 柰 酚 已报道

槲皮素4ˊ-0-β-D

-吡喃葡萄糖苷 已报道



Ⅷ 槲皮素3,4ˊ-二-0-β-D

-吡喃葡萄糖苷 已报道

Ⅸ 槲皮素3ˊ-甲氧基-4ˊ-0

-β-D-吡喃葡萄糖苷 已报道

、Ⅻ 正在鉴定中





1.化合物的结构鉴定

1.1化合物Ⅰ的结构鉴定分析

化合物Ⅰ为白色粉末,mp 248-250℃,微溶于吡啶、二甲基亚砜。呈兰色荧光。Molish反应、Liebermann-Burchard反应均呈阴性。分别用改良的碘化铋钾试剂、饱和苦味酸试剂、硫氰酸铬铵试剂进行沉淀反应,均呈阳性,初步确定化合物Ⅰ为生物碱类化合物。通过元素分析、1HNMR谱和13CNMR谱确定分子式为C17H17NO3UV λMeOHma nm:348310.5239.0示有多共轭体系。IRKBrcm-138613742, 3680, 3425-OH),3165N-H),1707( )16551597, 1531, 1445 (芳环骨架振动)1242, 1104, 1051,973(烯烃反式二取代);825(苯环C-H面外弯曲,对位取代)。13CNMR谱中给出13个信号,其中2个信号小于δ100,应归属饱和碳,而另外11个信号大于δ100,应为不饱和碳,其中δ118.5δ141.8分别与1HNMR谱中δ6.38dJ=15.7Hz)和δ7.44dJ=15.7 Hz)在HMQC谱中相关,由于其偶合常数J=15.7Hz大于12Hz,表明这些信号归属反式12-取代烯烃残基。而在HMBC相关谱又能观察与该残基呈远程相关的信号δ169.3,而该信号应归属于 ,因此该化合物中应有 片段。而其余8个信号中,有4个信号的强度异常高,考虑到碳谱信号少于分子式中的碳数,可推断为重叠信号,即8个碳信号归属12个不饱和碳,其中δ116.82C)和δ130.62C)分别与δ6.79(2H,d,J=8.6Hz)δ7.39(2H,d,J=8.6Hz) HMQC相关,而在HMBC中这些信号与δ127.8δ160.6信号之间出现相关峰,进一步分析其相关性确定为对位二取代苯残基,在1HNMR谱中,δ6.79(2H,d,J=8.6Hz)δ7.39(2H,d,J=8.6Hz)分别为芳环A3’-H5’-H2’-H6’-H的信号;在1H-1HCOSY谱中也得到确证。而δ160.6信号可初步推测连有羟基,综上分析该片段应为 。




理,13CNMR谱中δ116.32C)、δ130.82C)、δ131.4δ157.01HNMR谱中δ6.72(2H,d,J=8.4Hz)δ7.05(2H,d,J=8.4Hz)应归属于另一个

片段。
1HNMR谱中,δ6.72(2H,d,J=8.4Hz)δ7.05(2H,d,J=8.4Hz)分别为芳环B3”’-H5”’-H2”’-H6”’-H的信号峰。在1H-1HCOSY谱中也得到确证。剩余的2个饱和碳信号均为亚甲基信号,且相关谱中出现相关峰,推断为-CH2-CH2-片段。据HMBC中相关峰,推断各个片段的连接顺序应为




由于HMBC相关峰谱中没有给出烯烃残基上的碳与乙撑基上的碳氢信号相关峰,而观察到了羰基碳与亚甲基相关信号。故可推断上述两个片段是可通过一个杂原子即氮原子相连接,构成的该化合物的结构,即



命名为分蘖葱头甲素(Allium A)。



1.2化合物Ⅱ的结构鉴定分析

化合物Ⅱ为白色针状晶体,mp 239-240℃,微溶于甲醇、吡啶。兰色荧光, Molish反应、Liebermann-Burchard反应均呈阴性。分别用改良的碘化铋钾试剂、饱和苦味酸试剂、硫氰酸铬铵试剂进行沉淀反应,均呈阳性,初步确定化合物Ⅱ为生物碱类化合物。通过元素分析、1HNMR谱和13CNMR谱确定分子式为C6H11NOIR(KBr) cm-1: 3298(内酰胺中的N-H);2927-CH2-), 1707( )。13CNMR(CDCl3-C5D5N-CD3OD=1:1:1) 谱中给出6个信号,其中5个信号小于δ100,应归属饱和碳,均为亚甲基信号,在1HNMR谱中,δ2.27 (2H, dd, J=7.32, 7.32Hz )δ1.70 (2H, m, J=7.50, 7.50Hz )δ1.39 (2H, m, J=7.23, 7.50Hz)δ1.57 (2H, m, J=7.24, 7.24Hz)δ3.28 (2H, t, J=6.5Hz) 分别为饱和碳上的质子信号,且在1H-1HCOSY谱中也出现相关峰,推断为-CH2-CH2-CH2-CH2-CH2-。而另外1个信号δ174.7,应归属羰基碳,结合IR

1HNMR及1H-1HCOSY谱,推断此化合物应有 片段。由分子式可推断两个片段之间通过一个氮原子相连接,构成该化合物的结构即


命名为分蘖葱头乙素(Allium B)。



1.3化合物Ⅲ的结构鉴定分析

化合物Ⅲ为白色粒状结晶,mp 295-296℃,难溶于甲醇,Molish反应、Liebermann-Burchard反应均呈阳性,化合物Ⅲ与胡萝卜苷标准品在相同条件下进行硅胶薄层层析对照(展开剂AC),Rf值均一致。酸水解检测出葡萄糖和β-谷甾醇。化合物Ⅲ与胡萝卜苷标准品混合熔点不下降。推测化合物Ⅲ为胡萝卜苷。

1.4化合物Ⅳ的结构鉴定分析

化合物Ⅳ为白色片状晶体,mp 137-138℃MeOH),易溶于氯仿、二硫化碳,微溶于乙醇、丙酮,不溶于水。Molish反应呈阴性,Liebermann-Burchard反应呈阳性。化合物Ⅳ与β-谷甾醇标准品在相同条件下进行硅胶薄层层析对照(展开剂AB),Rf值均一致。化合物Ⅳ与β-谷甾醇标准品混合熔点不下降。推定化合物Ⅳ为β-谷甾醇。

1.5化合物Ⅴ的结构鉴定分析

化合物Ⅴ为黄色粉末,mp 301.0-302.0℃(MeOH),SrCl2-NH·H2O反应、Mg-HCl反应、FeCl3反应均呈阳性,示有邻二酚羟基;锆盐-枸橼酸反应有黄色且不消退,表明该化合物为3-OH黄酮类化合物,Molish反应呈阴性;与槲皮素标准品聚酰胺、硅胶薄层色谱对照,斑点的Rf值和荧光颜色均一致,混合后熔点不下降,推测化合物Ⅴ为槲皮素。



1.6化合物Ⅵ的结构鉴定分析

化合物Ⅵ为黄色针晶(MeOH),mp 277.0-278.0℃(MeOH),FeCl3反应、Mg-HCl反应均呈阳性,锆盐-枸橼酸反应有黄色且不消退,表明该化合物为3-OH黄酮类化合物;与山柰酚标准品进行硅胶薄层层析、聚酰胺薄膜层析对

照,斑点的Rf值和荧光颜色均一致,混合后熔点不下降。综上所述,推定化合物为山柰酚。

1.7化合物Ⅶ的结构鉴定分析

化合物Ⅶ为黄色粉末,mp 285.0-286.0℃MeOH),Mg-HCl反应呈阳性、锆盐-枸橼酸反应有黄色且不消退,表明该化合物为3-OH黄酮类化合物,Molish反应均呈阳性,酸水解后薄层检识出化合物Ⅴ和D-葡萄糖,与槲皮素4ˊ-O-β- D-吡喃葡萄糖苷标准品进行硅胶薄层层析、聚酰胺薄膜层析对照,斑点的Rf值和荧光颜色均一致,混合后熔点不下降。综上所述,化合物Ⅶ为槲皮素4ˊ-O-β- D-吡喃葡萄糖苷。

1.8化合物Ⅷ的结构鉴定分析

化合物Ⅷ为黄色粉末,mp 202.0-205.0℃MeOH),Mg-HCl反应、Molish反应均呈阳性,酸水解薄层检识出化合物Ⅴ和D-葡萄糖,与槲皮素34ˊ--O-β- D-吡喃葡萄糖苷标准品进行硅胶薄层层析,聚酰胺薄膜层析对照,斑点的Rf值和荧光颜色均一致,混合后熔点不下降。综上所述,化合物Ⅷ为槲皮素34ˊ--O-β- D-吡喃葡萄糖苷。

1.9化合物Ⅸ的结构鉴定分析

化合物Ⅸ为黄色粉末,mp 253.0-254.0℃MeOH),Mg-HCl反应、Molish反应均呈阳性,酸水解后薄层检识出化合物与对照品对照为D-葡萄糖,与槲皮素3ˊ-甲氧基-4ˊ-O-β- D-吡喃葡萄糖苷标准品进行硅胶TLC、聚酰胺薄膜层析对照,斑点的Rf值和荧光颜色均一致,混合后熔点不下降。综

上所述,推定化合物Ⅸ为槲皮素3ˊ-甲氧基-4ˊ-O-β- D-吡喃葡萄糖苷。
Tab 1 13CNMR and 1HNMR data of compound I ( TMS as internal standard in CD3OD)

No. 13C DEPT 1H HMBC 1H-1H COSY

1 169.3 C 2-H,3-H,1”-H

2 118.5 CH 6.38,d,J=15.7 3-H

3 141.8 CH 7.44,d,J=15.7 2-H

1’ 127.8 C 2-H,3’-H,5’-H

2’ 130.6 CH 7.39,d,J=8.6 3’-H,6’-H

3’ 116.8 CH 6.79,d,J=8.6 2’-H,5’-H

4’ 160.6 C 2’-H,6’-H

5’ 116.8 CH 6.79,d,J=8.6 3’-H,6’-H

6’ 130.6 CH 7.39,d,J=8.6 2’-H,5’-H

1” 42.6 CH2 3.46,t,J=7.4 2”-H

2” 35.9 CH2 2.75,t,J=7.4 1”-H

1”’ 131.4 C 1”-H,3”’-H,5”’-H

2”’ 130.8 CH 7.05,d,J=8.4 2”-H 3”’-H,6”’-H

3”’ 116.3 CH 6.72,d,J=8.4 2”’-H,5”’-H

4”’ 157.0 C 2”’-H,6”’-H

5”’ 116.3 6.72,d,J=8.4 2”-H 3”’-H,6”’-H

6”’ 130.8 7.05,d,J=8.4 2”’-H,5”’-H


employed for structural identification.




Tab 2 13CNMR and 1HNMR data of compound II [TMS as internal

standard in CDCl3-C5D5N-CD3OD(1:1:1)]


No. 13C DEPT 1H 1H-1H COSY



1 174.7 C

2 36.6 CH2 2.27,2H,dd,J=7.32,7.32 3-H

3 26.2 CH2 1.70,2H,m,J=7.50,7.50 2-H,4-H

4 29.8 CH2 1.39,2H,m,J=7.23,7.50 3-H,5-H

5 27.1 CH2 1.57,2H,m,J=7.23,7.23 4-H,6-H

6 39.6 CH2 3.28,2H,t,J=6.5 5-H

N-H 8.10,1H,s


employed for structural identification.


实验部分
1.1原料、仪器及层析条件

1.1.1实验原料

分蘖葱头购于长春,产地吉林省农安县,经长春中医学院邓明鲁教授鉴定为Allium cepa L. var. agrogatum Don.的鳞茎。

1.1.2 仪器


MP:REICHERT型熔点测定仪(温度未校正)

UV:JASCO V-52型紫外分析仪

NMR:Uarian Unity plus 400型、JEOL JNM-EX 270型和Bruker

DRX-500 型核磁共振分析仪

IR:JASCO 410FT-IR型红外光谱仪(KBr压片)

元素分析:Elementar Vario EL型元素分析仪

分析天平:湘仪天平仪器厂 TG328型光学读数分析天平

1.1.3 层析条件

材料与试剂:


柱层析用硅胶G200-300目):青岛海洋化工厂;薄层层析硅胶G10-40μ):青岛海洋化工厂;Diaion HP-20大孔树脂:日本三菱化学公司 ;Sephadex LH-20葡聚糖凝胶:日本三菱化学公司 ; 聚酰胺:上海警备区后勤部综合厂 ;所用试剂均为北京化工厂分析纯 。

标准品:


胡萝卜甙标准品、β-谷甾醇标准品:日本ナカラィテスク株式会社产品;槲皮素、山柰酚、槲皮素4ˊ-O-β- D-吡喃葡萄糖苷、槲皮素34ˊ--O-β- D-吡喃葡萄糖苷、槲皮素3ˊ-甲氧基-4ˊ-O-β- D-吡喃葡萄糖苷标准品均由本校药物化学教研室提供。

溶剂系统:


  1. 石油醚-乙酸乙酯(9:1)

  2. CHCl3 – MeOH- H2O(12:1:0.5)

  3. CHCl3 – MeOH- H2O(8:2:1)

  4. CHCl3- MeOH- EtOAc:H2O(7:3:3:1)

  5. EtOAc- CH3COCH3- H2O(20:10:4)

  6. CHCl3- MeOH (10:1)

  7. CHCl3- MeOH- H2O(40:9:1)

  8. CHCl3- MeOH- H2O(6:4:1)

显色剂:1%FeCl3乙醇液, p-茴香醛硫酸,苯胺-邻苯二甲酸正丁醇溶液


1.2 实验方法

1.2.1 提取


分蘖葱头提取分离方法如下:

Allium cepa L. var. agrogatum Don(30Kg)

Extd.With 95% EtOH

EtOH ext.



Concentrated to remove EtOH

Residue


Suspended in H2O

Extd With CHCl3




CHCl3 layer H2O layer



Evapd. Extd.with EtOH

Residue(24.2g)

EtOAC layer H2O layer



Evapd Extd.with n-BuOH

Residue(17.0g) n-BuOH layer H2O layer



Evapd

Residue(138.0g)


Chart 1 Isolation procedure of the compounds from Allium cepa L.var.Agrogatum Don.
1.2.2 分离和纯化

1.2.2.1 氯仿部分的分离和纯化见图2


CHCl3 residue(24g)

Column chromatographed on Si gel

With eluent A,B and C






Fr.a Fr.b Fr.c

Recrystallized Recrystallized

From EtOH From MeOH

Compand Ⅳ(365.5mg) Compand Ⅲ(354.3mg)


Chart4 Isolation procedure of the CHCl3 fraction

1.2.2.2正丁醇部分的分离和纯化见图3


n-BuOH residue(100g)

Sephadex HP-20


Fr.a Fr.b Fr.c



Column chromatographed on Si get

gel With eluent F,G and H




Fr.b1 Fr. b2



Stand overnight Column

Chromatographed

CompoundⅠ(30mg) on Si gel

Compound Ⅸ(10mg) Compound Ⅷ(40mg)


Chart3 Isolation procedure of the n-BuOH fraction

1.2.2.3乙酸乙酯部分的分离和纯化见图4

EtOAC residue(17.0g)

Sephadex LH-20

Eluted with MeOH




Fr.a Fr.b Fr.c Fr.d Fr.e



Column chromatographed Diaion with Recrystallizd Sephadex

on Si gel with eluent D eluent C from CH3OH LH-20, Recrystallized



Recrystallized CH3OH from CH3OH

compound Ⅶ(100mg) recystallized

Fr.a1 Fr.a2 Compound Ⅴ(589mg)

Compound Ⅱ(20mg) Compound Ⅵ(40mg)

Sephadex LH-20 column

Eluted with MeOH chromatographed

Recrystallized on si get with

Eluent E

Compound Ⅺ(139.6mg) recrystallized

Compound Ⅻ(52.6mg)
Chart4 Isolation procedure of the EtOAC fraction

化学成分鉴定
1.1化合物Ⅰ的鉴定

化合物Ⅰ为白色粉末,mp 248-250℃,微溶于吡啶、二甲基亚砜。呈兰色荧光。Molish反应、Liebermann-Burchard反应均呈阴性。分别用改良的碘化铋钾试剂、饱和苦味酸试剂、硫氰酸铬铵试剂进行沉淀反应,均呈阳性。IR(KBr) cm-1: 3861, 3742, 3680, 3425, 3165, 2362, 1707, 1655, 1597, 1531, 1445, 1242, 1104, 1051,973, 825, 413。λMeOHma nm:348、310.5、239.0。元素分析报告书、IR谱、1HNMR谱、13C-NMR谱、1H-1HCOSY谱、HMBC谱分别见附图1-11-21-31-41-51-613C-NMR谱数据见表1


    1. 化合物Ⅱ的鉴定

化合物Ⅱ为白色针状晶体,mp 239-240℃,微溶于甲醇、吡啶。呈兰色荧光, Molish反应、Liebermann-Burchard反应均呈阴性。分别用改良的碘化铋钾试剂、饱和苦味酸试剂、硫氰酸铬铵试剂进行沉淀反应,均呈阳性。IR(KBr) cm-1: 3861, 3742, 3679, 3295, 2927, 2361, 1707, 1634, 1532, 1464, 1260, 823, 414。元素分析报告书、IR谱、1HNMR谱、13C-NMR谱、1H-1HCOSY谱分别见附图2-12-22-32-42-513C-NMR谱数据见表2

三、药理活性

1.材料与方法

1.1动物与试剂


Wistar大鼠, 雄性,合格证号:医动字第10-5110 ,由吉林大学实验动物部提供;甘油三脂(TG)、总胆固醇(TC)、高密度脂蛋白胆固醇(HDL-c)、低密度脂蛋白胆固醇(LDL-c)诊断试剂盒,购于南京建成工程公司。

1.2分蘖葱头提取物A、B的制备

分蘖葱头鲜品4Kg,分成两份,一份样品用30%乙醇回流提取,去溶剂,得浸膏A(135.5g生药/1g浸膏);另一份样品用95%乙醇冷浸,去溶剂,得浸膏B(408g生药/1g浸膏)。

1.3营养性肥胖模型的建立:将大鼠随机分成2组,第1组12只,为空白对照组,给予按规定配制的基础饲料;第2组36只,为营养性肥胖模型组,给予营养饲料(营养饲料按100g基础饲料加入10g奶粉、10g猪油、1个鸡蛋、7g白糖配制而成)。喂养期间自由饮水、饮食,每日供给饲料2次,45d后形成营养性肥胖模型。

1.4对实验性营养性肥胖大鼠的减肥作用研究

取营养性肥胖模型大鼠36只,随机分为肥胖模型组、提取物A及提取物B 3组,每组12只。继续喂高热量饲料,12只空白对照组大鼠喂普通饲料,各组大鼠均自由饮水、饮食。提取物A组每天上午10时灌胃给予分蘖葱头提取物A 45mg/kg,提取物B组灌胃给予分蘖葱头提取物B 35mg/kg,每天1次,连续15天。实验期末测定各组大鼠的体重、体内脂肪重量(肾后、生殖器周围脂肪),同时测定全血低切(10/s)、中切(40/s)、高切(120/s)及血浆粘度(120/s)。另采血分离血清,测定TG、TC、HDL-c、LDL-c。



2.实验结果

2.1 分蘖葱头提取物A、B对肥胖性营养大鼠血脂的影响

由表1可以看出,模型对照组与空白对照组比较,血清TC明显升高,而TG、HDL-c及LDL-c无明显改变。提取物A组和提取物B组与模型对照组比较,血清TC有一定降低趋势,但无统计学意义(P>0.05),而对血清TG、HDL-c、LDL-c无明显影响。

表1 对大鼠血脂的影响(mmol/L,X±S,n=10)



组 别 TC TG HDL LDL

白对照组 1.182±0.222 0.837±0.193 0.325±0.069 0.897±0.229

模型对照组 1.523±0.209* 0.830±0.171 0.331±0.072 0.869±0.163

提取物A 1.398±0.182 0.802±0.468 0.385±0.083 0.882±0.135



提取物B 1.476±0.412 0.656±0.588 0.333±0.084 0.840±0.136

  与空白对照组比较 *P0.05


2.2 分蘖葱头提取物A、B对营养性肥胖大鼠组织脂肪重量的影响

实验结束后,对大鼠肾后及生殖器周围脂肪进行重量比较。从表2可以看出,与空白对照组比较,模型对照组肾后脂肪、生殖器周围脂肪、肾后脂肪/体重及生殖器脂肪/体重均明显增高(P<0.01);提取物B组的上述四项指标均显著低于模型对照组(P<0.01);而提取物A组的生殖器周围脂肪及生殖器脂肪/体重均低于模型对照组(P<0.01),肾后脂肪及肾后脂肪/体重有减少趋势,但无统计学意义(P>0.05)。
表2 对大鼠脂肪重量的影响(g,X±S,n=10)

组 别 肾后脂肪 生殖器周围脂肪 肾后脂/体重 生脂/体重

白对照组 3.104±1.077 2.118±0.889 0.013±0.005 0.008±0.003

模型对照组 6.796±1.827** 4.699±0.954** 0.025±0.007** 0.017±0.003**

提取物A 5.833±1.733 3.710±1.154# 0.021±0.008 0.013±0.005#

提取物B 4.722±1.641## 3.377±0.877## 0.017±0.006## 0.012±0.003##



与空白对照组比较 **P0.01

与模型对照组比较 #P<0.05 ##P<0.01


2.3 分蘖葱头提取物A、B对营养性肥胖大鼠血粘度的影响

由表3可以看出:分蘖葱头提取物B能降低营养性肥胖大鼠的全血低切粘度、中切粘度,但对高切粘度及血浆粘度无明显影响。分蘖葱头提取物A对营养性肥胖大鼠血粘度无影响。

]
表3 对大鼠血液流变学的影响(X±S,n=10)

全 血 粘 度

低 切 中 切 高 切

白对照组 9.880±1.275 5.018±0.398 4.279±0.326 1.415±0.269

模型对照组 11.436±4.953 4.932±0.471 4.426±1.114 1.569±0.188

提取物 A 9.622±2.628 4.678±0.681 3.965±0.436 1.980±0.413

提取物 B 7.920±0.864# 4.451±0.391# 3.822±0.357 1.600±0.267





与实验对照组比较 #P0.05

3. 讨论

建立动物肥胖模型一般采用喂高热量、高脂肪饲料,常用的配方有2种36,37),本实验采用高热量半合成饲料喂养大鼠,成功地建立了肥胖模型。

实验结果显示,分蘖葱头提取物A能降低营养性肥胖大鼠的脂肪,但对血脂无影响;分蘖葱头提取物B能显著降低营养性肥胖大鼠的脂肪,并能降低其全血低切粘度及中切粘度,起到减肥的作用。提取物B的作用优于提取物A。

由于本模型血脂代谢变化不明显,难以确认分蘖葱头提取物A、B是否具有降脂作用,有待于通过实验性高脂血症模型进一步证实。



四、结果与讨论
一、本实验对分蘖葱头非挥发性成分进行了提取、分离和鉴定,从氯仿、乙酸乙酯和正丁醇部分共分离出11个单体化合物,经理化常数测定及光谱解析,鉴定出其中9个单体的结构,分别为:化合物N-[2-(4-羟基苯基)乙基]-3-(4-羟基苯基)-2-丙烯酰胺{N-[2-(4-hydroxylphenyl) ethyl]-3-(4-hydroxylphenyl)-2-propenamide},1,6-己内酰胺(1,6-caprolactam ) , 胡萝卜苷(daucosterol), β-谷甾醇(β-sitosterol),槲皮素(quercetin),山柰酚(kaempferol),槲皮素4ˊ-0-β-D-吡喃葡萄糖苷(quercetin 4ˊ-0-β-D-glucopyranoside),槲皮素3,4ˊ-二-0-β-D-吡喃葡萄糖苷(quercetin 3,4ˊ-di-0--β-D-glucopyranoside), 槲皮素3ˊ-甲氧基-4ˊ-0-β-D-吡喃葡萄糖苷(quercetin 3ˊ-methoxy-4ˊ-0-β-D-glucopyranoside)。化合物为国内外未见报道的新化合物,命名为分蘖葱头甲素(Allium A),化合物为新天然产物,命名为分蘖葱头乙素(Allium B,化合物-为首次从分蘖葱头中分离得到,-为本教研室已报道的黄酮类化合物。另外尚有两个化合物正在鉴定中。这一研究成果为更好地开发和利用东北特产分蘖葱头这一植物资源提供了科学依据。

二、对分蘖葱头提取物A、B进行了减肥作用的实验研究。结果表明,分蘖葱头提取物B能够显著降低营养性肥胖大鼠的脂肪,并且能够降低其全血低切粘度、中切粘度,起到减肥的作用。为开发新型、高效、安全的药物提供了一定的科学依据。


参考文献

[1]江漫涛,杨晓虹,陈光荣,等.分蘖葱头和长梗薤白的研究(二).白求恩医科大学学报,1984,10:609

[2]谷月卿,刘银燕,杨晓虹,等.分蘖葱头和薤白对花生四烯酸代谢系列的干扰作用.药学学报,1988,23:8

[3]江漫涛,陈滴. 分蘖葱头和长梗薤白的研究(一).白求恩医科大学学报,1984,10:477

[4]马秀俐,赵然,陈滴,等.1-烯丙基-3-甲基三硫化物的化学合成.中国药学杂志,1994,29:687

[5]杨晓虹,陈滴,谷月卿,等.植物”AMO”中前列腺素A1的探索及抑制血小板聚集组分的分离(第一报).长春:白求恩医科大学1981-1982年度学术年会(论文摘要选编),1982:46

[6]孙启良,谷月卿,杨晓虹,等.植物中前列腺素的研究Ⅰ.中草药,1988,19:2

[7]杨晓虹,刘银燕,刘丽娟,等.分蘖葱头中新黄酮苷的结构鉴定.药学学报,2000,35:752

[8]杨晓虹,刘丽娟,周小平,等.分蘖葱头粗提物的血小板聚集作用.人参研究,1999,11:25

[9]中国植物志编辑委员会.中国植物志14卷.北京:北京科学出版社,1980.170

[10]Tashkhodzhaev B,Samikov K,Yagudaev M,et al. Khim Prir Soedin,1985,687

[11]彭军鹏,乔艳秋,姚新生,等.得自小根蒜及薤中的几种含氮化合物.中国药物化学杂志,1995,5:134

[12]Okuyama T,Fujita K,Shibata S,et al.Effects of Chinese Drugs “Xiebai” and “Dasuan” on Human Platelet Aggregation (Allium bakeri,A. sativum).Planta Med,1989,55:242

[13]Zou Zhongmei,Li Lijun,Yu Chuntao,et al.Sphingosine derivatives from the seeds of Allium tuberosum.J.Asian Nat.Prod.Res,1999,2:55

[14]Okuyama T,Shibata S,Hoson M,et al.Effect of Oriental Plant Drugs on Platelet Aggregation;Ⅲ. Effect of Chines Drug “Xiebai” on Human Platelet Aggregation. Planta Med, 1986,52:171

[15]Goda Y,Shibuya M,Sankawa U.Inhibitors of the Arachidonate Cascade from Allium chinese and Their Effect on in Vitro Platelet Aggregation. Chem Pharm Bull,1987,35:2668

[16]Nishioka,Tetsuo,Watanabe,Jun,Isolation and activitg of N-p-coumaroyltyramine and α-glucosidase inhibitor in Welshonion(Allium fistuosum).Biosci Biotechnol Biochem.1997, 61: 1138

[17]Phay Nyunt,Higashiyama Takako,et al.An antifungal compound from roots of Welsh onion.Phytochemistry 1999,52:271

[18]Tomita Fusao,Tsuji Masahisa,Tanaka Akiko.Novel antifungal compound isolated from leek root. Jpn Kokai Tokkyo Koho JP2000,26:413

[19] Yu s Vollerner,et al. Khim Prir Soedin,1989,24:505

[20] Yao Xinsheng,Peng Junpeng . Identification of new constituents in Allium macrostemon Bunge and chinense G. Don bulbs and their anti-blood platelet agglutination activities . Faming Zhuanli Shenqing GongKai Shuomingshu CN,1,102,186

[21]彭军鹏,陈浩,乔艳秋,等. 大蒜中两种新的甾体皂甙成分及其对血液凝聚性的影响. 药学学报,1996,31:607

[22]Mimaki Yoshihiro , Nikaido Tamotsu ,Matsumoto Katsumi,et al.New steroidal saponins from the bulbs of Allium giganteum exhibiting potent inhibition of cAMP phosphodiesterase activity.Chem Pharm Bull,1994,42:710

[23]Kuroda Minpei , Mimaki Yoshihiro ,Kameyama Aiko,et al.Steroidal saponins from Allium chinense and their inhibitory activities on cyclic AMP phospho-diesterase and Na+/K+-ATPase. Phytochemistry, 1995,40:1071

[24]Mimaki Y, Satou T,Kuroda M,et al. Chem Lett,1996,6:431

[25]Leighton Terrance,Ginther Charles ,Fluss Larry ,et al. Molecularcharacterization of quercetin and quercetin glycosides in Allium vegetable . Their effects on malignant cell transformation. ACS Symp Ser,1992,507:220

[26]Carotenuto Alfonso , Fattorosso Ernesto , Virginia Lanzotti, et al. Porrigenins A and B ,novel cytotoxic and antiproliferative sapogenins isolated from Allium porrum . J Nat Prod, 1997,60:1003

[27] Vollerner Yu S,Kravets SD,Shashkov AS.Khim Prir Soedin, 1990:231

[28]Inoue Toshihiro , Mimaki Yoshihiro , Sashida Yutaka,et al .Steroidal glycosides from Allium macleanii and A. senescens ,and their inhibitory activity on tumor promoter- induced phospholipid metabolism of Hela cells. Phytochemistry,1995,40:521

[29]Mimaki Yoshihiro , Kawashima Kazuhiro , Kanmoto Toshihiro, et al. Steroidal glycosides from Allium albopilosum and A. ostrowskianum. Phytochemistry,1993,34:799

[30] Kawashima Kazuhiro, Mimaki Yoshihiro , Sashida Yutaka. Schubertosides A-D, new 22(s)-hydroxycholestane glycosides from Allium schubertii. Chem Pharm Bull, 1991,39:2761

[31]Carotenuto Alfonso , Fattorusso Ernesto, Lanzotti Virginia, et al.The flavonoids of Allium neapolitanum. Phytochemistry,1997,44:949

[32] Carotenuto Alfonso ,DF Vincenzo ,Fattorusso Ernesto,et al.The flavonoids of Allium ursinum . Phytochemistry,1996,41:531

[33]Williamson G, Plumb G,Uda Y, et al.Dietary quercetin glycosides :antioxidant activity and induction of the anticarcinogenic phaseⅡ marker enzyme quinone reductase in Hepalclc 7 cells. Carcinogenesis ,1996, 17:2385

[34]Goda Y,Shiya M,Sankawa U.Chem Pharm Bull,1987,35:2668

[35] Masanoti Inagaki,Yasuo Harada,Koji Yamada,et al. Isolation and structure Determination of Cerebrosides from Garlic,the Bulbs of Allium sativum L.Chem Pharm Bull,1998,46:1153

[36]谢明智,刘海帆,张凌云,等.实验性肥胖及糖尿病大鼠模型.营养学报,1985.20:801

[37] 孙格遵,皇莆梅生,王晓,等.魔芋精粉减肥的实验研究.营养学报,1991,13:161




致 谢




Verilənlər bazası müəlliflik hüququ ilə müdafiə olunur ©azrefs.org 2016
rəhbərliyinə müraciət

    Ana səhifə